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一、清洗
新采用和重新使用的培養器皿，都要嚴格清洗，以防各種有害物質對培養細胞損害。培養用的塑料器皿目前主要依靠進口，均已無菌密封包裝，可直接使用。對于塑料瓶蓋或膠塞等，可水中浸泡后用2％NaOH煮沸10～20min，自來水中浸泡和蒸餾水漂洗2～3次，晾干備用。細胞培養中的絕大部分器皿系玻璃制品，清洗過程為以下步驟。
1. 浸泡 新使用或重復使用的玻璃器皿須經5％鹽酸溶液或自來水浸泡過夜或煮沸30min，水洗。以去除新購進玻璃器皿所帶有灰塵、鉛、砷等物質，并消除其弱堿性。
2． 刷洗 浸泡后用軟毛刷和的洗潔精進行刷洗。
3． 酸浸 刷洗后的玻璃制品酸浸前須適當晾干或烘干，以免造成酸浸液稀釋，影響效果。將玻璃制品*浸泡入清潔液中24h。清潔液具有*酸蝕作用，操作過程需戴防護用具。
4． 沖洗 浸酸后的玻璃器皿先用自來水充分沖洗，吸管需沖洗10min，器皿需每瓶灌滿自來水、倒掉反復10次以上，不殘余任何酸浸液殘跡，然后用蒸餾水漂洗2～3次，烘干備用。要求干凈透明，無油煙，不能殘殘余任何有害物質及化學藥品等。
二、消毒
1. 包裝 器材經清洗烤干或晾干后，先應嚴格包裝，然后再行消毒滅菌處理，以防止消毒滅菌后再次遭受污染。包裝材料常用包裝紙、牛皮紙、硫酸紙、棉布、鋁飯盒、玻璃或金屬制吸管筒、紙繩等。
2. 消毒 消毒滅菌隨物品的不同，而采用不同的方法。
（1）紫外線：主要用于消毒實驗室空氣、工作臺面和一些不能使用其他方法消毒的培養器皿。進無菌室前或做完實驗后，均應開燈照射30min進行消毒。紫外線照射60min可以消滅空氣中大部分細菌。
（2）消毒劑：操作者的皮膚、培養瓶的蓋和外壁常用碘酒、酒精消毒。無菌室內桌椅和物體的消毒可用0.1％新潔爾滅、過氧乙酸、來蘇兒等擦拭或浸泡。實驗室、無菌室的消毒可用甲醛熏蒸（高錳酸鉀5～7.5g，加40%甲醛10～15ml，混合放入一開放容器內，立即可見白色甲醛煙霧，房間密閉24h即可）。
（3）干熱消毒：多用于玻璃器皿消毒，干熱烤箱180℃45～60min。
（4）濕熱消毒：培養液、橡膠制品、塑料器皿等用68kPa（115℃）高壓滅菌10min；布類、玻璃制品、金屬器械等用103kPa（121.3℃）高壓滅菌15～20min。
（5）濾過消毒：用孔徑200～450nm大小的濾板可除去培養液和試劑中的細菌和霉菌等。用200nm孔徑的濾板通過兩次，可使支原體達到某種程度的去除，但不能除去病毒。濾器分為負壓和加壓式兩種。過濾的液體量很少時，可選用注射器微量濾膜濾器。
（6）60Co照射：不耐熱的塑料制品或一次性用品的滅菌可經包裝后，用γ射線照射消毒。
三、無菌操作
無菌操作是防止污染、決定培養是否成功的首要條件。由于體外培養細胞缺乏抗感染能力，在一切操作中要努力做到zui大限度的無菌。工作前對手部需清洗消毒，進無菌操作室時戴口罩和穿工作服。不能用手直接觸及已消毒器皿內部。打開培養瓶前或封閉瓶口前須火焰燒灼瓶口等。
四、取材
取材應注意無菌操作，防止污染。污染組織應放入含兩性霉素B（2μg/ml）、青霉素（500u/ml）、鏈霉素（500μg/ml）的培養液中浸泡10～20min。取材后應立即進行培養。如因故不能培養時，應在無菌條件下，把組織塊切成1cm3大小置于培養液中37℃貯存。存放時間不宜超過24h。
1． 源自人體的腫瘤和其他病理組織的取材、貯存和運送須注意防止污染。
2． 取血：多采用靜脈血，注意無菌操作，如需應用肝素等抗凝劑，也要注意消毒處理。血液、羊水、胸水和腹水等細胞懸液，可采用離心法分離，500～1000r／min，離心5～10min即可。
3． 動物組織：動物皮毛易隱藏微生物，且不易消毒，應特別注意無菌操作。
五、細胞分散法
1． 機械分散 對于腦、胚胎、腫瘤等軟組織，先用組織勻漿器研磨組織，再通過細胞篩獲得單細胞懸液。
2． 胰蛋白酶消化 適合于消化間質較少的軟組織，傳代細胞消化也常采用，是應用較廣泛的消化酶，由于Ca2+ 和Mg2+ 對胰蛋白酶活性有一定抑制作用，因此須用不含這些離子的緩沖液配制。將組織剪成1mm3大小，置于容器中，加入30～50倍體積的0.25%胰蛋白酶液，消化30～60min。
3． 膠原酶消化 對膠原有較強的消化作用，適用消化纖維組織、上皮組織及瘤組織等。膠原酶的使用終濃度為200U/ml或0.1～0.3μg/ml，其消化作用緩和。一般將3～5倍膠原酶溶液加入已剪碎的組織塊中，數小時或10余小時后，可見組織塊逐步變小至幾乎看不見，原來澄清的消化液轉變成混懸液時，可以終止消化，如組織塊較大、細胞量較多時，可于消化期間換消化液一次。消化液經低速離心5min后，去上清液，加入20％小牛血清培養液，輕輕打散細胞團，制成細胞懸液。
4． EDTA溶液分散 使用濃度為0.02%的EDTA溶液。常用于傳代細胞的消化，作用溫和，毒性小。
六、淋巴細胞分離法
取肝素抗凝血1ml加Hanks液1ml稀釋后，沿試管壁慢慢加入4ml淋巴細胞分離液之表面，勿與分離液混合。然后2000r/min水平離心20min，管內分4層，自上而下依次為血漿、單個核細胞(位于細胞分離液上界與血漿下界的中間呈白色霧狀層)、顆粒白細胞(位于淋巴細胞分離液下界與底層紅細胞上界的交界處)和紅細胞(位于管底)。用毛細吸管沿管壁輕輕吸出的淋巴細胞層。然后用Hanks液洗兩次，每次2000r/min離心10min，zui后計數供用。
七、細胞計數
待測細胞懸液0.1ml加D-Hanks液0.8ml及0.3%臺盼藍0.1ml(死細胞著色),混合后滴入血球計數板內。于低倍鏡下計數4角的4個大方格內的活細胞(透明未著色)總數,然后用下式計數:
細胞數/每毫升原液=(4大方格內活細胞數/4)×104×稀釋倍數
細胞存活率=(活細胞數/活細胞數+死細胞數)×100％
在計數時遇到對大方格壓線的細胞，應按數上不數下,數左不數右的原則進行計數。
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